PCR實(shí)用技巧

　　增加PCR的特異性：

　　1. primers design

　　這是最重要的一步。理想的，只同目的序列兩側(cè)的單一序列而非其它序列退火的primer要符合下面的 一些條件

　　1) 足夠長,18-24bp,以保證特異性.當(dāng)然不是說越長越好,太長的primer同樣會降低特異性,并且降低產(chǎn)量

　　2) GC% 40%~60%

　　3) 5’端和中間序列要多GC,以增加穩(wěn)定性

　　4) 避免3’端GC rich, 最后3個(gè)BASE不要有GC,或者最后5個(gè)有3個(gè)不要是GC (有人說：3’ 端最好是 GC/CG/CC/GG。)

　　5) 避免3’端的互補(bǔ), 否則容易造成DIMER

　　6) 避免3’端的錯(cuò)配

　　7) 避免內(nèi)部形成二級結(jié)構(gòu)

　　8) 附加序列(RT site, Promoter sequence)加到5’端, 在算Tm值時(shí)不算,但在檢測互補(bǔ)和二級結(jié)構(gòu)是要加上它們

　　9) 使用兼并primer時(shí), 要參考密碼子使用表,注意生物的偏好性,不要在3’端使用兼并primer,并使用 較高的primer濃度(1uM-3uM)

　　10) 最好學(xué)會使用一種design software. PP5,Oligo6,DNAstar, Vector NTI, Online design et al.

　　* primer的另一個(gè)重要參數(shù)是熔解溫度(Tm)。這是當(dāng)50%的primer和互補(bǔ)序列表現(xiàn)為雙鏈DNA分子時(shí)的溫度.Tm對于設(shè)定PCR退火溫度是必需的。在理想狀態(tài)下，退火溫度足夠低，以保證primer同目的序列有效退火， 同時(shí)還要足夠高，以減少非特異性結(jié)合。合理的退火溫度從55℃到70℃。退火溫度一般設(shè)定比primer的 Tm低5℃。

　　設(shè)定Tm有幾種公式。有的是來源于高鹽溶液中的雜交，適用于小于18堿基的primer。

　　有的是根據(jù)GC含量估算Tm。確定primerTm最可信的方法是近鄰分析法。這種方法從序列一級結(jié)構(gòu)和 相鄰堿基的特性預(yù)測primer的雜交穩(wěn)定性。大部分計(jì)算器程序使用近鄰分析法。

　　根據(jù)所使用的公式及primer序列的不同，Tm會差異很大。因?yàn)榇蟛糠止�式提供一個(gè)估算的Tm值，所有退火溫度只是一個(gè)起始點(diǎn)�？梢酝ㄟ^分析幾個(gè)逐步提高退火溫度的反應(yīng)以提高特異性。開始低于估算的Tm5℃，以2℃為增量，逐步提高退火溫度。較高的退火溫度會減少primer二聚體和非特異性產(chǎn)物的形成。

　　為獲得最佳結(jié)果，兩個(gè)primer應(yīng)具有近似的Tm值。primer對的Tm差異如果超過5℃，就會primer在循環(huán)中使用較低的退火溫度而表現(xiàn)出明顯的錯(cuò)誤起始。如果兩個(gè)primerTm不同，將退火溫度設(shè)定為比最低的Tm低5℃

　　或者為了提高特異性，可以在根據(jù)較高Tm設(shè)計(jì)的退火溫度先進(jìn)行5個(gè)循環(huán)，然后在根據(jù)較低Tm設(shè)計(jì)的退火溫度進(jìn)行剩余的循環(huán)。這使得在較為嚴(yán)緊的條件下可以獲得目的模板的部分拷貝。

　　2. stability of primers

　　定制primer的標(biāo)準(zhǔn)純度對于大多數(shù)PCR應(yīng)用是足夠的。

　　primer產(chǎn)量受合成化學(xué)的效率及純化方法的影響。定制primer以干粉形式運(yùn)輸。最好在TE重溶primer，使其最終濃度為100μM。TE比去離子水好，因?yàn)樗�的pH經(jīng)常偏酸，會引起寡核甘的水解。 primer的穩(wěn)定性依賴于儲存條件。應(yīng)將干粉和溶解的primer儲存在-20℃。以大于10μM濃度溶于TE的primer在 -20℃可以穩(wěn)定保存6個(gè)月，但在室溫(15℃到30℃)僅能保存不到1周。干粉primer可以在-20℃保存至少1年，在室溫(15℃到30℃)最多可以保存2個(gè)月.